Меню Рубрики

Анализ крови на гемокультуру инвитро

Посев крови – метод бактериологического исследования, использующийся для достоверного определения наличия бактерий в крови.

Посев используют для выявления в ней различных микроорганизмов приходится делать при многих заболеваниях. Посев крови осуществляют для обособленности, чтобы идентифицировать болезнетворных бактерий при бактериемии.

Бактериемия — это проникновение бактерий в кровь при генерализации инфекции в организме человека, заражении крови (сепсис). Данный вид анализа проводится в лабораториях медицинских учреждений.

Делают посев крови на жидкие питательные среды:

  • желчный бульон,
  • сахарный бульон,
  • жидкие и полужидкие среды для выращивания микробов анаэробов.

Для обнаружения микроорганизмов требуется несколько анализов не менее 3, так как количество бактерий в крови может колеблется.

Определенные виды бактерий можно выделить только специальными бактериологическими посевами (бак посев) крови.

Бак посев крови показывает чувствительность к антибиотикам той или иной группы бактерий. Определив вид выращенной колоний бактерий после посева, (микробиологического исследования) можно подобрать эффективные антибиотики против именно этой группы микроорганизмов (так называемый посев крови на стерильность).

Обнаружить бактерии будет трудно или вообще невозможно, если человек перед анализом посева крови принимал антибиотики, при продолжающемся инфицировании болезнетворными микроорганизмами.

Для наиболее точного диагностирования заболеваний недостаточно самого современного лабораторного оборудования.

Точность результатов зависит не только от используемых реактивов и аппаратуры, но и от времени и правильности сбора исследуемого материала. При несоблюдении основных правил подготовки к анализам их результаты могут быть значительно искажены.

Для исследования крови более всего подходят утренние часы

Для большинства исследований кровь берется строго натощак.

Кофе, чай и сок – это тоже еда.

Рекомендуются следующие промежутки времени после последнего приема пищи:

  • для общего анализа крови не менее 3-х часов;
  • для биохимического анализа крови желательно не есть 12-14 часов (но не менее 8 часов).

За 2 дня до обследования необходимо отказаться от алкоголя, жирной и жареной пищи.

За 1-2 часа до забора крови не курить.

Перед исследованием крови следует максимально снизить физические нагрузки.

  • Исключить бег, подъем по лестнице.
  • Избегать эмоционального возбуждения.
  • Минут10-15 нужно отдохнуть, расслабиться и успокоиться.

Нельзя сдавать кровь сразу после физиотерапевтических процедур, ультразвукового и рентгенологического исследования, массажа и рефлексотерапии.

Перед сдачей крови нужно исключить перепады температур, то есть баню и сауну.

Перед гормональным исследованием крови у женщин репродуктивного возраста следует придерживаться рекомендаций лечащего врача о дне менструального цикла, в который необходимо сдать кровь, так как на результат анализа влияют физиологические факторы фазы менструального цикла.

Перед сдачей крови необходимо успокоиться, чтобы избежать немотивированного выброса в кровь гормонов и увеличение их показателя.

Для сдачи крови на вирусные гепатиты желательно за 2 дня до исследования исключить из рациона цитрусовые, оранжевые фрукты и овощи.

Для правильной оценки и сравнения результатов ваших лабораторных исследований рекомендуется проводить их в одной и той же лаборатории

В разных лабораториях могут применяться разные методы исследования и единицы измерения показателей.

Бак посев можно назвать древним анализом, однако его популярность от этого отнюдь не падает, хотя современная бактериология имеет возможности найти и выделеть не только штаммы, но и отдельной клетки из него, которая называется клоном.

Однако для получения клона необходим специальный прибор – микроманипулятор, который в обычных лабораториях отсутствует, поскольку применяется, в основном, в научно-исследовательских целях (генетические исследования).

Результат оценивается после трехкратного посева. На посев берутся выделения из влагалища, менструальную кровь, соскоб или смыв эндометрия, содержимое очагов воспаления (например, из язв на шейке матки).

Даже проведение трехкратного посева дает низкий процент высеваемости палочек Коха. В дополнение используют ПЦР полученного биологического материала.

Количественную оценку грибковой инфекции можно дать с помощью посева грибков (культуральный метод).

Для таких целей материал с кожи, ногтей или волос собирают, как и в случае микроскопического исследования, далее:

  • Биологический материал переносят в специальную питательную среду.
  • Если во взятых образцах были грибки, то через некоторое время вырастают колонии.
  • Затем колонии изучаются под микроскопом, что позволяет определить род и вид грибка, а также его концентрацию.

Кроме того, возможно и проведение тестов на чувствительность грибков к определенным противогрибковым препаратам, что позволяет подобрать больному оптимальную схему лечения.

Посев крови необходим для определения возбудителя инфекционного процесса. В норме кровь является стерильной и только при определенной части заболеваний, в нее могут проникать микроорганизмы.

Такой тип инфицирования называется бактериемией.

Наиболее тяжелый вариант бактериемии – сепсис (септицемия, септикопиемия), но данное состояние проявляется яркой клинической картиной и в основном является уделом стационаров (в том числе отделения реанимации).

Не всегда наличие возбудителя в крови приводит к сепсису. Возможна даже физиологическая бактериемия (она кратковременная и может возникать, например, при чистке зубов и неосторожном травмировании десен).

И все же, если микроорганизм попал в кровь, необходимо его выделить, определить и выяснить, к каким антимикробным препаратам он может быть чувствителен.

В этом случае применяется посев на аробные и анаэробные бактерии.

Аэробные бактерии имеют зависимость от кислорода (то есть их размножение без кислорода невозможно или возможно, но очень кратковременно).

Анаэробные бактерии в свою очередь имеют способность размножаться и без присутствия вокруг них источников кислорода.

Другое название для посева на аэробные и анаэробные бактерии является посев крови на стерильность.

Как и в любом другом исследовании, посев может быть ложноотрицательным, это связано со спецификой забора крови при данном исследовании (очень часто, забор крови нужно проводить на высоте лихорадки – повышения температуры тела).

Ложноположительный результат – при несоблюдении правил стерильности лабораторного инструментария, что в современных лабораториях крайне недопустимо и обычно такого не происходит.

В некоторых случаях для подтверждения диагноза необходимо использовать трехкратный посев на стерильность, то есть кровь забирается три раза с небольшим промежутком во времени.

После успешного забора крови для посева на аэробные и анаэробные бактерии, данный материал помещают на питательную среду. В течение определенного времени начинается рост колоний бактерий, присутствующих в кровотоке пациента.

При помощи различных лабораторных тестов исследователь проводит идентификацию бактерии, а также выполняет тест на чувствительность к антибактериальным препаратам, что в дальнейшем поможет лечащему врачу назначить наиболее эффективное лечение болезни.

Если возникает подозрение, что в теле развивается стафилококк, в первую очередь, не надо паниковать.

Обнаружение стафилококка клиническом посеве в концентрации 10 в 3 степени при бессимптомном носительстве не угрожает человеку. Вам необходимо обратить внитание на укрепление иммунитета.

Для точного определения, стафилококк ли является возбудителем заболевания, у больного берут на исследование биоматериалы. Это может быть кровь, содержимое гнойничков, отходящая мокрота, а в некоторых ситуациях и спинномозговая жидкость.

Значимые показатели анализа – выявление в сыворотке крови антител к антигенам стафилококка. Для этого используют реакцию торможения гемолиза, реакцию пассивной гемагглютинации. Одновременно проверяется чувствительность бактерии к различным противомикробным препаратам, чтобы в последующем сделать правильный выбор лекарства для борьбы с ним.

В случае если человек относится к группе пациентов с повышенным риском стафилококковой инфекции (из-за перенесенных заболеваний, других причин, вызвавших ослабление иммунной системы), врач может рекомендовать прохождение быстрого теста на коагулазу.

Такое тестирование – надежный способ определения кокков в крови. Если он покажет положительный результат – значит возбудителем стал золотистый стафилококк, если отрицательный – эпидермальный или сапрофитный.

Итак, материалом для бактериологического посева является кровь в количестве 5 – 10 мл, полученная из локтевой вены.

Участок кожи обрабатывается сначала ватным шариком, смоченным в 70 % — ном этиловом спирте, а затем другим ватным шариком, смоченным в 1 – 2 % — ном растворе йода, до полного высыхания кожи.

Алгоритм здесь может быть такой же, как и при заборе крови вакуумными шприцами с той разницей, что вместо пробирки в переходник вставляется гемокультурный флакон.

В месте венепункции йод вытирают спиртом и заклеивают этот участок пластырем. Пластиковую крышку данного флакона отламывают, обеззараживают внутреннюю поверхность крышки 70 % этиловым спиртом.

При температуре 37°С кровь нужно хранить не более 2–х часов!

Лучше всего произвести посев крови на питательную среду сразу после её забора.

Соотношение крови и питательной среды – 1: 10,осторожно перемешать.

Для получения наиболее достоверного результата проведение анализа должно быть как минимум двоекратным из разных рук с интервалом времени в 30 минут.

Вышеописанного метода в том, что имеет он адекватную стоимость, высокую информативность, простоту в выполнении, а главное – доступность!

В настоящее время существуют два способа посева крови на питательную среду и определение чувствительности к антибиотикам:

  1. посев на флору с выявлением чувствительности к широкому спектру антибиотиков;
  2. посев на флору с выявлением чувствительности к основному спектру антибиотиков.

источник

07-04-001. Посев крови на стерильность (аэробные и анаэробные бактерии) с определением чувствительности к антибиотикам

Биоматериал: Кровь (флакон BD Bactec Plus/F)

Срок выполнения (в лаборатории): 8-10 р.д. *

Посев крови с целью выделения гемокультуры микроорганизмов используют в клинической практике, чтобы подтвердить или исключить наличие в крови бактерий (бактериемии).

Кровь в норме стерильна (не содержит бактерий), однако повседневная жизнь связана с риском контакта циркулирующей крови с бактериями, и время от времени у здорового человека может возникать преходящая бактериемия. Например, в полости рта присутствует большое количество микроорганизмов, которые почти всегда попадают в кровоток во время или после стоматологических манипуляций. Повреждения кожи или слизистых оболочек облегчает доступ в кровоток бактерий, колонизирующих эти покровы. Несмотря на асептическую технику, многие хирургические вмешательства сопровождаются попаданием в кровь небольших количеств бактерий из мест, где они обычно представлены в изобилии. Врожденные и приобретенные механизмы иммунной защиты поддерживают стерильность крови и предупреждают переход транзиторной бактериемии в сепсис, который время от времени развивается у ряда пациентов.

Посев крови полезен в 3 клинических ситуациях:

1) при подозрении на наличие у пациента сепсиса;

2) для диагностики некоторых инфекционных заболеваний, при которых возбудители (микроорганизмы) болезни распространяются с током крови; к таким заболеваниям относятся инфекционный эндокардит (инфекция клапанов сердца), остеомиелит (инфекция костей) и инфекционный артрит (инфекция суставов); кроме того, посев проб крови показан пациентам с пневмонией средней и тяжелой степенью тяжести;

3) у лиц с лихорадкой неясного генеза; лихорадка неясного генеза определяется как повышение температуры тела в течение более 10 дней без видимой причины.

При посеве крови на гемокультуру бактериологическая лаборатория обычно ежедневно выдает промежуточные заключения о наличии или отсутствии роста бактерий на питательных средах. Окончательный ответ включает идентификацию вида бактерий, выделенных из культуры, вместе со сведениями о чувствительности или устойчивости этого вида к антибиотикам.

Результаты посева крови распределяются на следующие 3 группы:

  • нет роста бактерий;
  • рост монокультуры (единственного вида бактерий) или чистой культуры;
  • смешанный рост (выделено более одного вида бактерий).

Отсутствие роста бактерий может быть достоверным результатом, если кровь пациента действительно стерильна. Окончательный отрицательный результат лаборатория выдает, если через 10 дней после посева крови роста бактерий на культуральных средах не обнаружено. Однако следует учесть возможность того, что такой результат является ложноотрицательным, т.е. у пациента есть бактериемия, но ее не удалось выявить. Причинами ложноотрицательного результата могут быть следующие обстоятельства:

  • во флакон с культуральной средой было добавлено недостаточно крови;
  • до взятия крови больному было начато лечение антибиотиками (антибиотики, содержащиеся в крови взятой пробы, угнетают рост бактерий);
  • инкубационный период недостаточен для получения роста редких медленно растущих видов бактерий.

При получении монокультуры или смешанного роста оценка результатов зависит от вида выделенных микроорганизмов и массивности роста.

Выделение патогенных видов бактерий с несомненностью свидетельствует об их этиологической роли в заболевании. В том случае, когда из крови выделены условно-патогенные микроорганизмы, иногда трудно решить является ли полученный вид бактерий результатом бактериального загрязнения (ложноположительный результат) или отражает наличие сепсиса (положительный результат). Выделение одного вида микроорганизмов в чистой культуре из крови более вероятно отражает наличие бактериемии, чем бактериальное загрязнение пробы, если:

  • тот же вид бактерий был выделен у больного и из какого-либо другого очага инфекции;
  • тот же вид бактерий был выделен при повторном взятии пробы крови;

Смешанный рост указывает на то, что из культуры крови было выделено более одного вида бактерий. При сепсисе такой результат встречается редко, поэтому в большинстве случаев свидетельствует о загрязнении культуральной среды, особенно если выделенные бактерии являются частью нормальной микрофлоры кожи.

Вместе с тем, при оценке результатов бактериологических исследований необходимо понимать, что рост микрофлоры в крови — важный диагностический признак сепсиса, но только при наличии соответствующей клинической картины заболевания.

При получении чистой культуры спектр антибактериальных препаратов, к которым определяется чувствительность, зависит от выделенного вида микроорганизмов.

В случае выделения штаммов метициллин-резистентного стафилококка дополнительно проводится определение чувствительности к антибактериальным препаратам (смотри раздел «Посев на метициллин-резистентный стафилококк и определение чувствительности к антибиотикам»).

Некоторые штаммы грамотрицательных бактерий семейства Enterobacteriacеae, высеваемых из крови, могут продуцировать бета-лактамазы расширенного спектра, т.е. относится к ESBL-штаммам, в таких случаях пациенту показано дополнительное исследование «Определение чувствительности ESBL-штаммов микроорганизмов».

Необходимо придерживаться асептической техники, чтобы исключить бактериальное загрязнение культуры. При правильном взятии проб в культуре крови присутствует только тот микроорганизм, который находится в крови пациента.

Читайте также:  Анализ крови на стафилококк что показывает

1. Кровь следует брать из периферической вены. Никогда не используйте для этого постоянный катетер, который может быть загрязнен бактериями.

2. Процедуру нужно проводить в стерильных перчатках. Место венепункции необходимо обработать 2 % раствором йода или другим антисептиком. Через 1-2 мин йод следует удалить 70 % этиловым спиртом и убедится, что кожа сухая. Крышка флаконов с культуральной средой, куда вносят образец крови, тоже должна быть продезинфицирована 70 % этиловым спиртом.

3. Кровь берут стерильным шприцем и иглой, стараясь не прикасаться руками к месту венепункции.

4. Перед введением крови из шприца во флакон с культуральной средой через закрывающую его резиновую пробку, иглу следует обязательно сменить. Это предупреждает попадание в культуру бактерий, которые могли попасть на иглу с кожи пациента. Никогда не снимайте пробку с флакона с культуральной средой. Это может привести к ее загрязнению бактериями из окружающей среды.

5. Флаконы с культурой крови должны быть снабжены этикеткой с данными о пациенте и вместе с бланком-заявкой немедленно отправлены в лабораторию. Если кровь берут, когда лаборатория закончила работу, флаконы следует поместить в термостат при температуре 37° С, чтобы мог начаться рост бактерий. В бланке-заявке на бактериологическое исследование крови важно привести клинические данные о пациенте (диагноз) и сведения о терапии антибиотиками, если она проводилась до взятия крови.

Помимо техники для успешного обнаружения специфического возбудителя сепсиса важно соблюдать определенные правила взятия проб крови для получения гемокультуры:

  • многократный в течение суток бактериологический посев крови (обычно не менее 3-5 раз в сутки, кровь берут на фоне повышения температуры тела у пациента за 2-3 ч до ее максимального подъема в 2 флакона — для аэробов и анаэробов); при однократном посеве крови на гемокультуру максимально удается получить 80 % положительных результатов, при двухкратном — 90 % и трехкратном — 99 %;
  • большинство методов, используемых в бактериологических лабораториях, дают положительный результат исследования гемокультуры при количестве бактерий от 10 до 15 в 1 мл крови; увеличение количества крови, взятой для исследования на гемокультуру с 2 мл до 20 мл, повышает вероятность получения положительного результата с 30 до 50 %, за исключением новорожденных;
  • у детей с сепсисом количество бактерий в 1 мл крови выше, чем у взрослых, поэтому объем взятия крови рассчитывают следующим образом: у детей до 10 лет — 1 мл крови на каждый год жизни, старше 10 лет — 20 мл;
  • оптимальное соотношение между количеством взятой крови для исследования и культуральной средой должно составлять 1:10;
  • не следует откладывать начало лечения антибиотиками для того, чтобы получить несколько проб крови в течение большого промежутка времени (с целью повысить вероятность положительного результата исследования гемокультуры).

* На сайте указан максимально возможный срок выполнения исследования. Он отражает время выполнения исследования в лаборатории и не включает время на доставку биоматериала до лаборатории.
Приведенная информация носит справочный характер и не является публичной офертой. Для получения актуальной информации обратитесь в медицинский центр Исполнителя или call-центр.

источник

Анализ крови на стерильность назначают с целью выявления или исключения бактериемии, которая может быть причиной различных заболеваний. Стерильность, то есть отсутствие в крови бактерий, – нормальное состояние, которое поддерживается факторами иммунной системы. Исследование, которое еще называют бактериальным посевом крови, проводят, если есть подозрения на заболевания, связанные с проникновением в кровь болезнетворных микробов.

Посев крови на стерильность имеет несколько показаний:

  • повышенная температура тела, которая держится длительное время, при этом других симптомов нет, причину такого состояния определить не удается;
  • подозрение на сепсис (заражение крови);
  • подозрение на инфекции (стрептококковые, стафилококковые, кишечные);
  • хирургические операции;
  • длительная катеризация;
  • наличие искусственных клапанов сердца.

Основная цель посева крови на стерильность – это обнаружение в ней таких болезнетворных микроорганизмов:

  • золотистый стафилококк;
  • синегнойная палочка;
  • стрептококк;
  • энтеробактерия;
  • клебсиелла;
  • иерсинии;
  • дрожжевые грибы.

Бак посев позволяет поставить такие диагнозы:

  • менингит;
  • эндокардит;
  • сепсис;
  • туберкулез;
  • остеомиелит;
  • пиодермия (гнойное заболевание кожных покровов).

Подготовка к анализу очень проста. За два-три дня не рекомендуется есть жирное, жареное и принимать алкоголь. Последний прием пищи – не позднее, чем за 12 часов до процедуры. За несколько часов до сдачи нельзя курить.

Взятие крови на стерильность проводится несколько раз за определенный промежуток времени, поскольку одноразовое исследование нельзя считать результативным. Утверждать, что возбудителем заболевания является какой-либо конкретный микроорганизм, можно только при проведении серии исследований (двух и более) и неоднократном выделении его из крови и других биологических материалов (мокроты, мочи). При этом микроорганизм должен быть обнаружен на разных питательных средах одновременно.

Забор крови проводят при максимальном повышении температуры. Брать ее нужно до того, как начнется специфическое лечение антибиотиками, в крайнем случае, не ранее чем через сутки после последнего приема.

Кровь на стерильность берут в утренние часы из вены в области локтевого сгиба. Место введения шприца тщательно обрабатывают: сначала спиртом (70%), затем йодом (1-2%). Шприц вводят после полного высыхания места укола. Для тестирования требуется 10 мл.

После того, как у больного взяли кровь, производят посев на благоприятную для роста бактерий питательную среду и выдерживают несколько суток при температуре 37-38°C в термостате.

По истечении времени в результате роста бактерий на поверхности появляются колонии, которые видны невооруженным глазом. По их виду лаборант может определить вид микроорганизма. Выявленную бактерию сеют в чашку Петри. По ее окружности кладут смоченные в разных антибиотиках диски из бумаги. Чашка Петри помещается на несколько суток в термостат, где вырастают новые колонии. Эффективным будет тот препарат, вокруг диска с которым роста бактерий не наблюдается, что говорит о гибели микробов или невозможности их развития.

Сегодня применяют два способа посева:

  • на среду для определения чувствительности к основным антибиотикам;
  • на среду для выявления чувствительности к широкому спектру препаратов.

Первые результаты получают через трое суток. Для получения окончательного результата может потребоваться от 10-ти до 14-ти дней.

Анализ можно сдать в любом медицинском учреждении, где есть лаборатория. Компания «Инвитро» – одна из крупнейших независимых лабораторий, предлагающих свои услуги во многих городах России. Сеть «Инвитро» работает около 20-ти лет. Здесь можно пройти любое исследование крови, в том числе тест на стерильность.

Этот тест проводится достаточно редко. Сдавать кровь на бактериемию приходится в том случае, если другими способами не удалось определить возбудителя инфекции. Этот анализ дает возможность точно определить вид микроорганизма, а также показывает стадию болезни.

источник

Заказать уход
Посев крови на гемокультуру с определением чувствительности к антибиотикам.
(495) 748-93-69 с 10 до 20
(495) 507-54-59 с 10 до 20
Дом престарелых/Врач на дом:
(495) 799-20-63 с 10 до 20
/ Главная / Медицинские Анализы / Цены на анализы

Для начала нужно пояснить, в чём суть данного анализа и для чего его применяют? Итак, посев крови на гемокультуру с определением чувствительности к антибиотикам необходим для обнаружения патогенной микрофлоры при сепсисе и бактериемии (другими словами, в случае проникновения микроорганизмов в кровяное русло, их размножение и распространение).

Цель:
подтвердить либо опровергнуть наличие бактерий и идентифицировать их между собой для назначения адекватной антибиотикотерапии.

Вообще, этот анализ необходимо проводить всем пациентам, имеющим лихорадку, озноб. В норме патогенной микрофлоры в крови быть не должно. Наиболее вероятный признак наличия какого – либо инфекционного заболевания у человека – это напряжённая (стойкая) бактериемия. Чаще всего в результате обнаруживаются такие микроорганизмы, как синегнойная палочка, стрептококки, золотистые стафилококки, энтеро и кишечные бактерии, дрожжевые грибы. У ВИЧ – инфицированных нередки случаи выявления микобактерий туберкулёза в крови.

Очень важным моментом является проведение посевов крови до начала лечения курсом антибиотиков! В противном случае возможен ложноотрицательный результат. Если же больной уже начал принимать лекарства, то забор крови для анализа производят перед непосредственным их приемом.

Итак, материалом для бактериологического посева является кровь в количестве 5 – 10 мл, полученная из локтевой вены. Участок кожи обрабатывается сначала ватным шариком, смоченным в 70 % — ном этиловом спирте, а затем другим ватным шариком, смоченным в 1 – 2 % — ном растворе йода, до полного высыхания кожи. Методика здесь может быть такой же, как и при заборе крови вакуумными шприцами с той разницей, что вместо пробирки в переходник вставляется гемокультурный флакон. В месте венепункции йод вытирают спиртом и заклеивают этот участок пластырем. Пластиковую крышку данного флакона отламывают, обеззараживают внутреннюю поверхность крышки 70 % этиловым спиртом. При температуре 37°С кровь нужно хранить не более 2–х часов! Лучше всего произвести посев крови на питательную среду сразу после её забора. Соотношение крови и питательной среды – 1: 10,осторожно перемешать. Для получения наиболее достоверного результата проведение анализа должно быть как минимум двоекратным из разных рук с интервалом времени в 30 минут.

Преимущества Вышеописанного метода в том, что имеет он адекватную стоимость, высокую информативность, простоту в выполнении, а главное – доступность!

В настоящее время существуют два способа посева крови на питательную среду и определение чувствительности к антибиотикам:

1) посев на флору с выявлением чувствительности к широкому спектру антибиотиков;
2) посев на флору с выявлением чувствительности к основному спектру антибиотиков.

Фактор перекрестной резистентности – это тот фактор, который обязательно учитывается при выявлении чувствительности к антибиотикам. Означает он возможность бактерий не реагировать сразу на несколько видов лекарственных препаратов. Чувствительные патогенные микроорганизмы возможно уничтожить с помощью установленной ранее дозой препарата; промежуточные — с помощью небольшого увеличения дозы; устойчивые – с помощью замены препарата.

Менингит, сепсис, кожные гнойничковые поражения, кишечные инфекции.

источник

Общие требования

  1. Проведение исследования и сбора материала до начала лечения антибиотиками, антисептиками, противогрибковыми препаратами.
  2. Использование расходных материалов (контейнеров, пробирок, флаконов с питательными средами и транспортных систем в пробирках, сухих стерильных тампонов, направительных бланков), выдаваемых Независимой лабораторией ИНВИТРО.
  3. Правильное хранение выданных транспортных сред (в холодильнике) и согревание до комнатной температуры перед использованием (примерно 30 минут).
  4. Правильный выбор транспортной среды для каждого вида исследования. Информацию об используемых транспортных средах и других расходных материалах смотрите в разделе «Описание тестов».
  5. Обязательная маркировка пробирок, контейнеров, флаконов и транспортных сред с указанием Фамилии И.О., даты рождения, даты и времени взятия материала и локализации, откуда получен образец.
  6. При оформлении направительного бланка заполнение всех граф, с указанием локализации материала и номера теста. Информация на бланке и материале должны совпадать, иначе материал в работу не будет браться.
  7. Соблюдение сроков и режима хранения проб, полученных для исследований.

Информация для гастроэнтерологов

ПРАВИЛА СБОРА КАЛА ПРИ ИССЛЕДОВАНИИ МИКРОФЛОРЫ КИШЕЧНИКА (ДИСБАКТЕРИОЗ)

  1. Все обследуемые пациенты за 1-3 дня до взятия пробы должны находиться на диете, исключающей приём продуктов, усиливающих процессы брожения в кишечнике и молочно-кислые продукты, также алкоголь, антибиотики и бактерийные препараты (содержащие бифидобактерии, лактобактерии, кишечные палочки и т.д.).
  2. Материалом служит кал после естественной дефекации, который собирают в чистый одноразовый контейнер с завинчивающейся крышкой и ложечкой.
  3. Не рекомендуется собирать кал из унитаза.
  4. Собирают кал на чистую поверхность, в качестве которой может быть использован чистый новый лист (пакет) из полиэтилена или бумаги (этот способ является предпочтительным).
  5. При использовании судна, его предварительно хорошо промывают с мылом и губкой, ополаскивают многократно водопроводной водой, а потом обдают кипятком и остужают.
  6. Кал берут преимущественно из средней порции специальной ложечкой, вмонтированной в крышку стерильного контейнера, в количестве не более 1/3 от объема контейнера. Не наполняйте контейнер доверху. Тщательно закройте крышку.
  7. Срок и режим хранения уточняйте у менеджеров Независимой лаборатории ИНВИТРО.
  8. Для правильной оценки результатов рекомендуется проведение 2-3-кратных исследований с интервалом 1-2 дня.

ИССЛЕДОВАНИЕ КАЛА НА ПАТОГЕННУЮ И УСЛОВНО-ПАТОГЕННУЮ МИКРОФЛОРУ

  1. Взятие проб кала должно осуществляться на ранних этапах болезни, пока патогенные микробы содержатся в материале в большом количестве.
  2. Для сбора кала пациенту выдается контейнер с крышкой и ложечкой.
  3. Если пациент собирает кал дома, ему нужно выдать инструкцию (см. выше), где изложены правила сбора и предупредить о том, что материал должен быть доставлен в лабораторию, как можно быстрее.
  4. Если кал собирается в условиях медицинского центра и доставка не может быть осуществлена в кратчайший срок, для сохранности материала используют транспортную систему со средой Cary Blair. Тампон погружают в фекалии поочередно в нескольких местах, после чего он погружается в пробирку с транспортной средой. Нет необходимости переносить кусочки кала.
  5. Если кал собираются исследовать только на золотистый стафилококк или грибы, то в качестве транспортной среды может быть использована среда Эймс с углем.
  6. При исследовании кала на ротавирус жидкий кал доставляется только в контейнере, а не на тампоне.
  7. Хранение кала уточняйте у менеджеров Независимой лаборатории ИНВИТРО.

ИССЛЕДОВАНИЕ РЕКТАЛЬНОГО СОДЕРЖИМОГО

  1. Перед взятием мазка проводится тщательный туалет с мылом и водой области вокруг анального отверстия для снижения контаминации пробы.
  2. Осторожно вводят тампон на 2,5 см вглубь анального сфинктера и аккуратно вращают его в течение 10 секунд для получения материала с анальных складок, после чего помещают в пробирку с транспортной средой Cary Blair.
  3. Если цель исследования посев на гонорею, мазок берут аналогичным образом в транспортную среду Эймс с углем.
  4. Хранение материала, в зависимости от вида исследования, уточняйте у менеджеров Независимой лаборатории ИНВИТРО.
Читайте также:  Анализ крови папы для роддома

ЖЕЛЧЬ

  1. Желчь собирают при зондировании в процедурном кабинете отдельно по порциям А, В и С в три стерильные пробирки с плотно закрывающимися крышками.
  2. Полученные порции желчи желательно доставить в лабораторию не позднее 1-2 ч от момента взятия.
  3. При невозможности доставить материал в указанный срок, допускается хранение.
  4. Сроки и режим хранения уточняйте у менеджеров Независимой лаборатории ИНВИТРО.

ИССЛЕДОВАНИЕ ПРОМЫВНЫХ ВОД, ЛАВАЖА (ИЗ ЖЕЛУДКА)

  1. Материал собирается рано утром, до еды, пока пациент еще в постели.
  2. Вводят назо-гастральный зонд через нос в желудок.
  3. Желудок промывают 25-50 мл охлажденной дистиллированной водой.
  4. Далее жидкость отсасывается и помещается в стерильный контейнер. Крышку плотно закрывают.
  5. Аккуратно, следуя правилам, удаляют зонд.
  6. Материал может храниться не более 2-х часов при комнатной температуре и не более 24-х часов при 2-8°С.

АБДОМИНАЛЬНАЯ И ПЕРИТОНЕАЛЬНАЯ ЖИДКОСТИ

  1. 1-2% раствором йода дезинфицируют кожу в области манипуляции.
  2. Посредством чрезкожной пункции (или во время операции) жидкость набирается в шприц.
  3. Важно набрать большой объем жидкости (сколько возможно)! Полученную жидкость помещают в стерильный контейнер с крышкой. Крышку плотно закрывают.
  4. Допустимо использовать для транспорта и культивирования флаконы для гемокультур, тогда соблюдают те же правила, что и при взятии крови (в этом случае следует заказать исследование № 438).
  5. Материал хранят в тепле и доставляют в лабораторию силами заказчика при температуре 35°С.

ПРАВИЛА СБОРА ГРУДНОГО МОЛОКА

  1. Перед сцеживанием молока тщательно помойте руки и молочные железы с мылом, обработайте соски и околососковую область ватными тампонами, смоченными 70% спиртом (каждая железа обрабатывается отдельным тампоном).
  2. Сцедите первые 5-10 мл в отдельную посуду (т. к. эта порция молока не пригодна для исследования), последующие 4-5 мл сцедите в стерильный контейнер, старайтесь при этом не касаться краёв контейнера телом.
  3. Молоко из каждой железы собирайте в отдельный контейнер. После сцеживания плотно закройте крышку, стараясь не дотрагиваться краев контейнера руками.
  4. Промаркируйте каждый контейнер, указав фамилию, инициалы, дату рождения, на каждом контейнере необходимо указать: «правая молочная железа» или «левая молочная железа».
  5. Молоко до отправки в лабораторию должно храниться в холодильнике не более 24-х часов.

Информация для гинекологов

ПРАВИЛА ВЗЯТИЯ МАЗКОВ У ЖЕНЩИН ДЛЯ МИКРОСКОПИЧЕСКОГО (БАКТЕРИОСКОПИЧЕСКОГО) ИССЛЕДОВАНИЯ

  1. Используйте только новые стекла с матовым краем, которые выдаёт Независимая лаборатория ИНВИТРО (или, если у вас в нужный момент не оказалось наших стекол, вы можете использовать свои, но обязательно новые, проверьте, чтоб они были чистыми).
  2. Перед тем, как взять мазок очень важно убрать из влагалища избыток выделений и слизи сухой стерильной марлевой салфеткой (т. к. там содержатся разрушенные клетки и лейкоциты, детрит и мертвые микробные клетки). При несоблюдении этого требования описанная нами микроскопическая картина введёт вас в заблуждение, т. к. ядра эпителиальных клеток и детрит встречаются при таком патологическом состоянии, как цитолитический вагиноз, которого на самом деле может и не быть, а часть микробов не удастся правильно идентифицировать, в связи с тем, что они потеряют способность правильно воспринимать красители.
  3. Нанесите мазок в центре стекла и распределите материал равномерно тонким слоем.
  4. Маркируйте стекло на противоположной от мазка стороне.
  5. Отметьте на стекле локализацию каждого мазка, если их наносится на стекло более одного (например «С», «V», «U»).
  6. На матовом крае простым карандашом укажите ФИО пациента, дату рождения.
  7. Дайте мазку хорошо высохнуть прежде, чем упаковать перед отправкой.
  8. Сроки и режим хранения уточняйте у менеджеров Независимой лаборатории ИНВИТРО.

ПРАВИЛА СБОРА МОЧИ ДЛЯ ЖЕНЩИН

  1. Перед сбором мочи подготовьте 6 — 10 чистых ватных шариков, сосуд с теплым мыльным раствором (пользуйтесь обычным туалетным мылом), сосуд с теплой кипяченой водой и контейнер для сбора мочи (крышку контейнера приоткройте так, чтобы её можно было снять одной рукой).
  2. Вымойте руки с мылом.
  3. Удобно расположитесь на унитазе и разведите колени как можно шире.
  4. Вымойте область наружных половых органов, последовательно меняя 4 ватных шарика, смоченных в мыльном растворе. Каждым шариком необходимо провести по направлению от лобка к заднему проходу только один раз, стараясь проникать во все складки.
  5. Промойте намыленный участок с помощью двух и более ватных шариков, смоченных в теплой кипяченой воде. Каждым шариком необходимо провести по направлению от лобка к заднему проходу только один раз, стараясь проникать во все складки.
  6. Во избежание попадания в мочу выделений из влагалища, во время сбора мочи женщинам, живущим половой жизнью, рекомендуется ввести во влагалище тампон.
  7. Снимите крышку с контейнера и возьмите его в руку, стараясь не касаться краев. Приготовьтесь собрать мочу.
  8. Удерживая половые губы разведенными, выпустите немного мочи в унитаз, приостановите мочеиспускание, а затем, подставив контейнер под струю мочи, наполните его до половины объема. Постарайтесь не прикасаться контейнером к телу.
  9. Плотно закрыть.
  10. Произвести маркировку пробы на этикетке, находящейся на пробирке. Сроки и режим хранения уточняйте у менеджеров Независимой лаборатории ИНВИТРО.

ОТДЕЛЯЕМОЕ УРЕТРЫ

  1. Перед взятием мазка на посев проводится туалет наружных половых органов для снижения контаминации пробы с помощью стерильных салфеток и дистиллированной воды.
  2. Материал собирают не ранее, чем через 2 часа после мочеиспускания.
  3. Для стимуляции выделений нежно массируют уретру, отделяемое собирают стерильным тампоном, входящим в состав транспортной среды Эймс с углем.
  4. Если отделяемое получить не удается, в уретру вводят стерильный тампон на глубину 1-2 см, аккуратно вращают его в течение 10 сек., вынимают, помещают в транспортную среду Эймс с углем. Предварительно тампон можно слегка смочить в стерильном физиологическом растворе (это снизит неприятные или болевые ощущения во время манипуляции).
  5. Для исследования на микоплазмы транспортной средой является флакончик с бульоном светло-желтого цвета. Для сбора материала используют сухой тампон без среды, находящийся в индивидуальной стерильной упаковке.
  6. Материал хранится, помещенный в транспортную среду, в зависимости от вида исследования, сроки и условия хранения уточняйте у менеджеров Независимой лаборатории ИНВИТРО.

ОТДЕЛЯЕМОЕ ВУЛЬВЫ, ПРЕДДВЕРИЯ ВЛАГАЛИЩА

  1. Материал берут стерильным тампоном, входящим в состав транспортной системы Эймс с углем.
  2. При воспалении бартолиниевых желез производят их пункцию. При вскрытии абсцесса железы гной берут стерильным тампоном, входящим в состав транспортной системы Эймс с углем, после чего его погружают в пробирку со средой.
  3. Сроки и режим хранения уточняйте у менеджеров Независимой лаборатории ИНВИТРО.

ОТДЕЛЯЕМОЕ ВЛАГАЛИЩА

  1. Материал берут до проведения мануальных исследований.
  2. Зеркало и подъемник вводят во влагалище, стерильной салфеткой убирают избыток выделений и слизи. Материал собирают из заднего свода или с патологически измененных участков стерильным тампоном, входящим в состав транспортной системы со средой Эймс с углем.
  3. При исследовании на уреа/микоплазмы для сбора материала используют сухой тампон, находящийся в индивидуальной стерильной упаковке. После того, как материал получен, его суспендируют во флаконе для микоплазм.
  4. Хранение материала, в зависимости от вида исследования, уточняйте у менеджеров Независимой лаборатории ИНВИТРО.

ОТДЕЛЯЕМОЕ ШЕЙКИ МАТКИ

  1. Обнажают шейку матки с помощью зеркал и влагалищную ее часть и убирают избыток выделений и слизи стерильной марлевой салфеткой или ватным шариком, смоченными стерильным физиологическим раствором или дистиллированной водой. Далее вытирают салфеткой избыток влаги.
  2. Тонкий стерильный тампон (входящий в состав транспортной системы) аккуратно вводят в цервикальный канал и вращают 10 сек., не касаясь стенок влагалища.
  3. Для посева можно использовать соскоб слизистой, полученный при диагностическом выскабливании стенок цервикального канала. В этом случае материал переносится на тампон и погружается в пробирку с транспортной средой Эймс с углем.
  4. При исследовании на уреа/микоплазмы материал берут так же, как описано выше.
  5. Хранение материала, в зависимости от вида исследования, уточняйте у менеджеров Независимой лаборатории ИНВИТРО.

СОДЕРЖИМОЕ ПОЛОСТИ МАТКИ

  1. Используют специальные инструменты типа шприца-аспиратора, имеющего на зонде покрытие.
  2. При введении зонда в полость матки раскрывают наружную оболочку зонда и набирают в шприц содержимое матки.
  3. Закрывают наружную оболочку и выводят зонд из матки.
  4. Материал из шприца помещают на тампон и погружают в транспортную среду Эймс с углем.
  5. Хранение материала, в зависимости от вида исследования, уточняйте у менеджеров Независимой лаборатории ИНВИТРО.

Информация для урологов

ПРАВИЛА ВЗЯТИЯ МАЗКОВ У МУЖЧИН ДЛЯ МИКРОСКОПИЧЕСКОГО (БАКТЕРИОСКОПИЧЕСКОГО) ИССЛЕДОВАНИЯ

  1. Используйте только новые стекла с матовым краем, которые выдаёт Независимая лаборатория ИНВИТРО (или, если в нужный момент у вас не оказалось наших стекол, вы можете использовать свои, но обязательно новые и чистые).
  2. Перед тем, как взять мазок из уретры очень важно провести гигиеническую обработку кожи головки полового члена с помощью мыла и воды для уменьшения контаминации мазка посторонней флорой. После обработки осушить головку полового члена с помощью стерильной марлевой салфетки.
  3. С помощью специальных инструментов, используемых в вашем медицинском центре, соберите отделяемое уретры, нанесите мазок в центре стекла и распределите материал равномерно тонким слоем.
  4. Если исследуется секрет простаты, мазок наносится на стекло, распределяется равномерно тонким слоем.
  5. Обязательно дайте мазку хорошо высохнуть прежде, чем упаковывать перед отправкой.
  6. На матовом крае простым карандашом укажите ФИО пациента, дату рождения.
  7. Сроки и режим хранения уточняйте у менеджеров Независимой лаборатории ИНВИТРО.

ПРАВИЛА СБОРА МОЧИ ДЛЯ МУЖЧИН

Для анализов №440, №444

  1. Вымойте руки с мылом.
  2. Отведите назад крайнюю плоть (если она не обрезана), головку полового члена вымойте с мылом теплой кипяченой водой, просушите с помощью чистой салфетки.
  3. Подготовьте контейнер, приоткрыв крышку контейнера так, чтобы ее можно было снять одной рукой. Не дотрагивайтесь руками до внутренних стенок контейнера и крышки.
  4. Выпустите небольшое количество мочи в унитаз. Приостановите мочеиспускание.
  5. Удерживая крайнюю плоть в отведенном положении, направьте струю мочи в контейнер и наполните его до половины объема, при этом старайтесь не касаться краев контейнера. Если целью исследования является выявление уреа/микоплазм, то объем мочи должен быть не менее 40-50 мл (это почти полный контейнер).
  6. Тщательно закройте контейнер крышкой.
  7. Хранение материала уточняйте у менеджеров Независимой лаборатории ИНВИТРО.

Для анализов №№ 441, 442, 443

  1. Вымойте руки с мылом.
  2. Отведите назад крайнюю плоть (если она не обрезана), головку полового члена вымойте с мылом теплой кипяченой водой, просушите с помощью чистой салфетки.
  3. Подготовьте контейнер, приоткрыв крышку контейнера так, чтобы ее можно было снять одной рукой. Не дотрагивайтесь руками до внутренних стенок контейнера и крышки.
  4. Выпустите небольшое количество мочи в унитаз. Приостановите мочеиспускание.
  5. Удерживая крайнюю плоть в отведенном положении, направьте струю мочи в контейнер и наполните его до половины объема, при этом старайтесь не касаться краев контейнера. Объём мочи должен быть не менее 1/3 контейнера.
  6. Плотно закрыть.
  7. Произвести маркировку этикетки, находящейся на пробирке.
  8. Хранение материала уточняйте у менеджеров Независимой лаборатории ИНВИТРО.

ОТДЕЛЯЕМОЕ УРЕТРЫ

  1. Материал собирают не ранее, чем через 2-3 часа после мочеиспускания.
  2. Перед взятием мазка из уретры, кожу обрабатывают салфеткой, смоченной стерильным физиологическим раствором или дистиллированной водой. Высушивают стерильной салфеткой.
  3. В уретру на глубину 2-4 см аккуратно вводят стерильный тампон на тонком аппликаторе, входящий в состав транспортной системы Эймс с углём. Нежно, но интенсивно вращают им внутри в течение 10 сек., после чего тампон помещают в пробирку со средой.
  4. Если проводится исследование на уреа/микоплазмы, для сбора материала используется тампон без среды, находящийся в индивидуальной стерильной упаковке. Клетки и слизь с тампона тщательно суспендируют в соответствующий флакон с жидкой средой.
  5. Хранение материала, в зависимости от вида исследования, уточняйте у менеджеров Независимой лаборатории ИНВИТРО.

СЕКРЕТ ПРОСТАТЫ

  1. Перед сбором материала проводят тщательный туалет наружных половых органов с помощью мыла и кипяченой воды.
  2. Проводят ручной массаж простаты через прямую кишку.
  3. Материал собирают в стерильную пробирку, а затем используют транспортную систему со средой Эймс с углем. Пропитайте жидкостью стерильный тампон и поместите его в пробирку с транспортной средой.
  4. Если проводится исследование на уреа/микоплазмы, собранный материал в количестве 0,5 мл (несколько капель) помещается во флакончик с транспортной средой для микоплазм.
  5. Можно сразу собрать секрет простаты во флакончик.
  6. Хранение материала, в зависимости от вида исследования, уточняйте у менеджеров Независимой лаборатории ИНВИТРО.

ОТДЕЛЯЕМОЕ ЯЗВЫ ПОЛОВОГО ЧЛЕНА

  1. Очищают поверхность язвы тампоном, смоченным физиологическим раствором, корочки удаляют.
  2. Производят соскоб язвы до появления серозной жидкости.
  3. Стерильной салфеткой удаляют жидкость и органические наслоения. (Следует избегать кровоточивости).
  4. Надавливают у основания язвы до появления серозной жидкости.
  5. Аспирируют выделившуюся жидкость шприцом с тонкой иглой.
  6. Материал из шприца переносят на тампон, который потом погружают в пробирку со средой Эймс с углем.
  7. Сроки и режим хранения уточняйте у менеджеров Независимой лаборатории ИНВИТРО.

ПРАВИЛА СБОРА СПЕРМЫ

  1. Перед сбором материала тщательно вымойте руки с мылом, а затем проведите туалет наружных половых органов также с мылом и водой. Головку полового члена и крайнюю плоть высушите стерильной салфеткой.
  2. Подготовьте контейнер, крышку контейнера приоткройте так, чтобы ее можно было снять одной рукой. Не дотрагивайтесь руками до внутренних стенок контейнера и крышки.
  3. Материал получают путем мастурбации и собирают в стерильный контейнер. Если объём полученной спермы очень мал, можно использовать транспортную систему со средой Эймс с углем. Для этого пропитайте жидкостью стерильный тампон, входящий в состав транспортной системы и поместите его в пробирку со средой. Возможна доставка материала в контейнере.
  4. Обратите внимание на то, чтобы крышка на контейнере была хорошо закрыта (во избежание вытекания материала).
  5. Если проводится исследование на уреа/микоплазмы, собранный материал в количестве 0,5 мл (несколько капель) помещается во флакончик с транспортной средой для микоплазм.
  6. Хранение материала, в зависимости от вида исследования, уточняйте у менеджеров Независимой лаборатории ИНВИТРО. При исследовании на гонорею материал хранится и доставляется заказчиком самостоятельно в наиболее короткие сроки при температуре 35С. Срок хранения материала в транспортной среде не более 5-6 часов.
Читайте также:  Анализ крови показывает вирусную или бактериальную инфекцию

Информация для отоларингологов

Материал не следует брать при воспаленном надгортаннике, так как может возникнуть обструкция дыхательных путей.

  1. Мазок берут натощак или через 2-3 часа после еды и питья.
  2. Обратите внимание на то, что перед манипуляциями не надо полоскать рот.
  3. Аккуратно прижимают язык шпателем, стерильным тампоном от транспортной системы Эймс с углем проводят между дужками миндалин, по язычку и задней стенке глотки, не касаясь губ, щек и языка. При наличии гнойных наложений мазок желательно брать на границе здоровых и пораженных тканей (т. к. именно там находится наибольшее количество микробов).
  4. Тампон погружают в пробирку с транспортной средой.
  5. Сроки и режимы хранения уточняйте у менеджеров Независимой лаборатории ИНВИТРО.

МАЗКИ ИЗ НОСА

  1. Для обоих носовых ходов используется один тампон с транспортной средой Эймс.
  2. Перед взятием мазков не надо промывать носовые ходы.
  3. Вводят тампон в носовой ход на глубину 2-2,5 см на уровне носовой раковины.
  4. Прижать тампон крылом носа к носовой перегородке и вращательными движениями тампона собирают материал со слизистой носа.
  5. Аналогичным образом берут материал в другом носовом ходе.
  6. Тампон погрузить в пробирку с транспортной средой.
  7. Сроки и режимы хранения уточняйте у менеджеров Независимой лаборатории ИНВИТРО.

АСПИРАТ ИЗ ПАЗУХ

  1. Производят пункцию верхнечелюстной пазухи, соблюдая правила асептики.
  2. Далее содержимое аспирационного шприца переносят на стерильный тампон, входящий в состав транспортной системы Эймс с углем (можно небольшое количество жидкости добавить в пробирку с транспортной средой).
  3. Сроки и режимы хранения уточняйте у менеджеров Независимой лаборатории ИНВИТРО.

ЖИДКОСТЬ ПРИ ТИМПАНОЦЕНТЕЗЕ

  1. Очищают наружный слуховой проход слабым раствором антисептика.
  2. Если барабанная перепонка не нарушена, ушной канал промывают мыльным раствором, ополаскивают, высушивают, и, используя аспирационную технику, набирают жидкость в шприц. Далее аспират из шприца переносят на стерильный тампон, входящий в состав транспортной системы Эймс с углем (можно небольшое количество жидкости добавить в пробирку с транспортной средой).
  3. При прободении барабанной перепонки экссудат собирают стерильным тампоном, входящим в состав транспортной системы Эймс с углем, используя слуховое зеркало.
  4. После взятия материала тампон погружают в пробирку со средой.
  5. Сроки и режимы хранения уточняйте у менеджеров Независимой лаборатории ИНВИТРО.

ОТДЕЛЯЕМОЕ ИЗ НАРУЖНОГО СЛУХОВОГО ПРОХОДА.

  1. Обрабатывают кожу 70% спиртом и промывают физиологическим раствором.
  2. При помощи влажного (смоченного стерильным физиологическим раствором) тампона из ушного канала удаляют соринки и корки.
  3. Материал из очага берут стерильным тампоном, входящим в состав транспортной системы Эймс с углем, интенсивно вращая им в наружном слуховом проходе (но осторожно, чтоб не повредить барабанную перепонку).
  4. После взятия материала тампон погружают в пробирку со средой.
  5. Сроки и режимы хранения уточняйте у менеджеров Независимой лаборатории ИНВИТРО.

Информация для пульмонологов

ПРАВИЛА СБОРА МОКРОТЫ

  1. Исследованию подлежит утренняя мокрота, выделяющаяся во время приступа кашля.
  2. Перед откашливанием необходимо почистить зубы и прополоскать рот кипяченой водой с целью механического удаления остатков пищи, слущенного эпителия и микрофлоры ротовой полости. Следите за тем, чтобы в контейнер не попала слюна и носоглоточная слизь (особенно при насморке!).
  3. Выделившуюся мокроту собирают в стерильный контейнер с красной крышкой.
  4. Крышку плотно закрывают, чтобы материал не вытек.
  5. Если мокрота отделяется плохо, накануне пациенту дают отхаркивающие средства.
  6. Для микроскопического исследования мазок на стекле делать не надо, мокроту присылают в контейнере.
  7. Сроки и режим хранения уточняйте у менеджеров Независимой лаборатории ИНВИТРО.

ТРАХЕОБРОНХИАЛЬНЫЕ СМЫВЫ

  1. Исследуют при отсутствии мокроты или невозможности ее выделить естественным путем.
  2. Гортанным шприцем в трахею вводят не более 5 мл стерильного физиологического раствора с последующим его отсасыванием в стерильную пробирку с желтой крышкой.
  3. Бронхиальные смывы, в том числе вблизи очага воспаления, могут быть сделаны с помощью бронхоскопа.
  4. Смывную жидкость помещают в стерильный контейнер с крышкой. Крышку плотно закрывают.
  5. Сроки и режим хранения уточняйте у менеджеров Независимой лаборатории ИНВИТРО.

ПЛЕВРАЛЬНАЯ ЖИДКОСТЬ

  1. Кожу перед пункцией обрабатывают 2% раствором йода, а затем 70% этиловым спиртом.
  2. Делают прокол и собирают жидкость в стерильную пробирку с соблюдением правил асептики.
  3. Во время получения материала участвуют двое, один пунктирует, другой открывает крышку пробирки в нужный момент, стараясь не прикасаться руками к верхнему краю пробирки и внутренней поверхности крышки.
  4. Сроки и режим хранения уточняйте у менеджеров Независимой лаборатории ИНВИТРО.

Информация для окулистов

ОТДЕЛЯЕМОЕ КОНЬЮНКТИВЫ

  1. Материал для посева забирается утром до умывания.
  2. При наличии обильного гнойного отделяемого используют стерильный тампон, входящий в состав транспортной системы Эймс с углем. Гной собирают с внутренней поверхности нижнего века движением от наружного к внутреннему углу глазной щели.
  3. Необходимо следить, чтобы при моргании ресницы не касались тампона (придерживать веки руками).
  4. При скудном отделяемом тампон предварительно смачивают стерильным физиологическим раствором или стерильной дистиллированной водой. Избыток влаги отжимают о внутреннюю поверхность ёмкости, далее собирают материал, как описано в пункте 1.
  5. Хранение тампона, помещенного в транспортную среду, уточняйте у менеджеров Независимой лаборатории ИНВИТРО.

СОСКОБ С РОГОВИЦЫ

  1. В каждый глаз закапывается местный анестетик.
  2. При помощи стерильной лопаточки делают соскоб с язвы или другого образования.
  3. Если больной применяет контактные линзы, необходимо исследовать их внутреннюю поверхность.
  4. Из полученного материала делают мазок на стекле для микроскопического исследования, для этого используют тампон без транспортной среды в индивидуальной стерильной упаковке.
  5. На посев берут мазок тампоном, входящим в состав транспортной системы со средой Эймс с углем.
  6. Хранение тампона, помещенного в транспортную среду, уточняйте у менеджеров Независимой лаборатории ИНВИТРО.

Информация для хирургов

ОТДЕЛЯЕМОЕ ПОВЕРХНОСТНЫХ РАН

  1. Поверхность кожи вокруг раны обрабатывают ватным тампоном, смоченным 70% этиловым спиртом или другим антисептиком.
  2. После высыхания дезинфектанта, стерильной марлевой салфеткой удаляют детрит, некротические массы, гной.
  3. Отделяемое из раны для посева берут с помощью тампона, входящего в состав транспортной системы Эймс с углем, для микроскопического исследования — с помощью тампона без среды, находящегося в индивидуальной стерильной упаковке. Материал на тампон собирают круговыми вращательными движениями от центра к периферии пораженного участка в течение 5-10 секунд (во время взятия материала не касаются окружающих рану тканей, кожи и слизистых) и погружают в пробирку с транспортной средой.
  4. Сроки и режим хранения уточняйте у менеджеров Независимой лаборатории ИНВИТРО.

СОДЕРЖИМОЕ ГЛУБОКИХ РАН И АБСЦЕССОВ

  1. Удалите поверхностный экссудат салфеткой, смоченной стерильным физиологическим раствором или 70% спиртом.
  2. После дезинфекции поверхности раны и высыхания дезинфектанта врач с помощью шприца и иглы берет аспират из глубины раны. Если имеется везикула, берется жидкость и клетки у основания дефекта.
  3. Если первоначально аспират взять не удалось, подкожно вводят стерильный физиологический раствор и повторно пытаются взять аспират.
  4. Далее аспират помещают в стерильную пробирку.
  5. Стерильный тампон от транспортной системы пропитывают полученной жидкостью и погружают в пробирку со средой.
  6. При взятии материала во время операции отсылают вместе с аспиратом и кусочек ткани, образующей стенку абсцесса. Его можно поместить с помощью этого же тампона вглубь транспортной среды в ту же пробирку.
  7. Сроки и режим хранения уточняйте у менеджеров Независимой лаборатории ИНВИТРО.

ЦЕЛЛЮЛИТ

  1. Поверхность кожи над местом наибольшего воспаления обрабатывают салфеткой, смоченной стерильным физиологическим раствором или 70% спиртом.
  2. С помощью иглы и шприца аспирируют содержимое из мягких тканей, далее через эту же иглу набирают в шприц небольшое количество стерильного физиологического раствора.
  3. Жидкостью из шприца пропитывают тампон, который погружают в транспортную среду Эймс с углем, часть жидкости (несколько капель) можно добавить в пробирку.
  4. Сроки и режим хранения уточняйте у менеджеров Независимой лаборатории ИНВИТРО.

ПРОЛЕЖНИ, ЯЗВЫ

  1. Поверхность пролежня (язвы) и кожу вокруг обрабатывают стерильным физиологическим раствором.
  2. Материал получают путем энергичного надавливания тампоном на дно язвы. Поверхностный экссудат для исследования непригоден.
  3. Тампон с полученным материалом помещают в транспортную среду Эймс с углем.
  4. Сроки и режим хранения уточняйте у менеджеров Независимой лаборатории ИНВИТРО.

ПРАВИЛА ВЗЯТИЯ КРОВИ ПРИ ПОСЕВЕ НА СТЕРИЛЬНОСТЬ

  • Перед процедурой взятия крови выньте флаконы для гемокультур из холодильника.
  • Для взрослых и детей (весом > 40 кг) используют 2 флакона на один анализ.
  • Для детей раннего возраста, чей вес менее 40 кг — 1 флакон (педиатрический).
  • Флаконы должны быть согреты до комнатной температуры. Для ускорения процесса можно поместить флаконы в ёмкость с тёплой (но не горячей) водой.
  • Перед взятием крови отломить у флаконов пластиковые крышки и для дезинфекции обработать поверхность внутренних крышек салфеткой, смоченной 70% этиловым спиртом в течение 1 минуты.
  1. Кожу над пунктируемой веной тщательно обрабатывают 70% этиловым спиртом, затем 1-2% настойкой йода 30 сек.
  2. После высыхания обработанного участка, не прикасаясь руками к обработанной поверхности, производят венепункцию.
  3. Флаконы должны быть промаркированы с указанием фамилии, инициалов, даты рождения и даты взятия материала.
  4. После завершения процедуры йод удаляют с кожи салфеткой с 70% этиловым спиртом и область прокола закрывают лейкопластырем. Попросите пациента подержать руку согнутой в локтевом сгибе для того, чтоб предотвратить образование гематомы. В случаях остро возникшего сепсиса следует проводить 2-3-кратные исследования с интервалом 30-60 мин. Кровь на исследование рекомендовано брать во время подъема температуры, а не на высоте лихорадки.

Информация для стоматологов

СОДЕРЖИМОЕ ИЗ ЗУБО-ДЕСНЕВОГО КАРМАНА

  1. Осторожно промойте десневой карман и прилегающую поверхность зуба стерильным физиологическим раствором, удалив слюну, остатки пищи и зубной налёт.
  2. Осторожно удалите с помощью инструментов участок воспаленной ткани и, соблюдая правила асептики, перенесите его в пробирку с питательным бульоном. Энергично перемешайте содержимое с помощью тампона, входящего в транспортную систему со средой Эймс с углем так, чтобы он хорошо пропитался жидкостью. Далее тампон поместите в пробирку со средой.
  3. Если получить биоптат не удаётся, то энергично потрите стерильным бумажным или другим подходящим по размеру аппликатором (или зубной нитью) в десневом кармане. Стерильными ножницами отрежьте исследуемый край аппликатора над открытой пробиркой с бульоном, так чтобы он попал в неё. Далее действуйте, как описано выше. Для исследования непригоден весь аппликатор, т.к. часть его контаминирована посторонней флорой с перчаток персонала.
  4. Правила хранения собранного материала уточняйте у менеджеров Независимой лаборатории ИНВИТРО.

АСПИРАТ ИЗ ВЕРХНЕ-ЧЕЛЮСТНОЙ ПАЗУХИ

  1. Производят пункцию верхнечелюстной пазухи.
  2. Далее содержимое аспирационного шприца переносят на стерильный тампон, входящий в состав транспортной системы Эймс с углем.
  3. Правила хранения собранного материала уточняйте у менеджеров Независимой лаборатории ИНВИТРО.

АБСЦЕСС (ОТКРЫТЫЙ)

  1. Удалите поверхностный экcсудат салфеткой, смоченной стерильным физиологическим раствором.
  2. Удалите жидкость из глубины.
  3. Энергично прикасаясь, соберите тампоном исследуемый материал или удалите кусочек с приподнятого края абсцесса.
  4. Поместите тампон в пробирку с транспортной средой.
  5. Правила хранения собранного материала уточняйте у менеджеров Независимой лаборатории ИНВИТРО.

АБСЦЕСС ЛИМФОУЗЛА

  1. Обработайте поверхность кожи (слизистой) салфеткой, смоченной 70% спиртом, высушите стерильной марлевой салфеткой.
  2. Проколите стенку абсцесса с помощью иглы и шприца и наберите содержимое, соблюдая правила асептики, перенесите на тампон, входящий в состав транспортной системы Эймс с углем.
  3. Далее поместите тампон в транспортную среду.
  4. Правила хранения собранного материала уточняйте у менеджеров Независимой лаборатории ИНВИТРО.

БУККАЛЬНЫЙ ЦЕЛЛЮЛИТ

  1. Промойте поверхность слизистой над местом наибольшего воспаления салфеткой, смоченной стерильным физиологическим раствором.
  2. С помощью иглы и шприца попробуйте аспирировать содержимое из мягких тканей, далее наберите в шприц через эту же иглу небольшое количество стерильного физиологического раствора.
  3. Перенесите жидкость из шприца в стерильную сухую пробирку.
  4. Вскройте упаковку с транспортной средой Эймс, пропитайте тампон собранной в пробирку жидкостью и поместите его в пробирку со средой.
  5. Правила хранения собранного материала уточняйте у менеджеров Независимой лаборатории ИНВИТРО.

ЯЗВА ПРИ НЕКРОТИЧЕСКОМ СТОМАТИТЕ

  1. Обработайте поверхность стерильным физиологическим раствором.
  2. Если получить биоптат невозможно, энергично потрите тампоном, входящим в состав транспортной системы Эймс, о дно язвы.
  3. Поместите тампон или биоптат в транспортную среду.
  4. Поверхностный экссудат для исследования не пригоден.
  5. Правила хранения собранного материала уточняйте у менеджеров Независимой лаборатории ИНВИТРО.

источник